MUTILACION DE ANIMALES

PROTOCOLO DE NECROPSIA (NATIONAL INSTITUTE FOR DISCOVERY SCIENCE, USA)

Para las muertes inexplicables de animales
La muerte del animal debe ser considerada sospechosa cuando:
– ocurre de repente en animales en buen estado de salud
– hay muerte inducida por una causa aparentemente desconocida bajo circunstancias extrañas
– Se evidencian lesiones poco comunes.
El primer paso es tomar una exacta y detallada historia del caso. Esto incluye:
– Nombre del propietario
– Identificacion del establecimiento
– Lugar de procedencia
– Reseña del animal (especie, raza, edad, sexo, color del pelaje, numero de caravana, marcas y señales, peso, etc.)
– Numero de animales del rebaño; tipo de alimentacion, antecedentes de vacunacion
– Antecedentes sanitarios del rebaño. Morbilidad y mortalidad.
– La descripcion de señales clinicas (si estuvieran disponibles) o historia sanitaria del animal muerto.
– Determinar el ultimo momento en el cual el animal fue observado en el lugar antes de la muerte, y condiciones de ese momento.
– Momento cuando ocurrio la muerte (si es conocido) o cuando fue descubierto el animal muerto.
– La situacion y las caracteristicas geograficas de la propiedad y el lugar donde fue observado el evento (ubicacion en el lote, tipo de pastura)
– Distancia de los vias de acceso, rutas, caminos rurales, conexiones con campos vecinos, etc.,
– Ocurrencias anteriores similares en las proximidades del lugar
– ¿El veterinario estuvo involucrado examinando el/los animal/es? ¿Se realizaron necropsias? ¿Hay resultados de necropsias? El nombre de veterinario, direccion y TE.
– ¿Que examen de laboratorio fue realizado? ¿Cuales fueron los resultados?
– Las observaciones particulares relacionadas al caso
Cualquier otra informacion que ayude a tener una imagen exacta de las circunstancias en que ocurrio el evento (huellas de vehiculos, de humanos o rastros de animales que pudieran rodear el cadaver, materia fecal de aves o animales carroñeros, rastros de pelos, evidencias de pataleo del animal afectado, etc.

Medidas de Seguridad
o mascaras faciales
o gafas protectoras
o guantes de goma
o botas de goma
Si el cadaver se cubrio con lona o plastico esperar durante algun tiempo para la ventilacion antes de tocarlo.

El examen externo
o El ambiente: la tierra, la vegetacion, la presencia de señales de forcejeo antes de la muerte
o El cuerpo y la posicion
o La condicion general del animal
o La integridad del cuerpo (que partes desaparecieron: descripcion del tipo de incision, corte o desgarramiento)
o La condicion de la piel (la uniformidad, presencia de tumefacciones, fracturas, parasitos, lesiones y/o materiales extraños)
o Observacion de los orificios naturales (bucal, nasal, rectal, vaginal, prepucial, orejas)
o Observacion de las mucosas (conjuntiva, bucal, prepucial, rectal, nasal, vaginal), con especial enfasis en el color y la textura
o Observacion de las descargas (nasal, bucal, vaginal, etc)
o Observacion de los cambios despues de la muerte (la rigidez cadaverica, putrefaccion, opacidad de cornea, etc)
o Olores que emanan del cadaver y/o ambientes
o Los materiales extraños en el cuerpo (los polvos, las hojas, el cesped, la tierra, etc)
o La temperatura del cuerpo, comparada a las condiciones externas,
Necropsia
o Ponga el animal en decubito lateral izquierdo, si es posible con la parte de atras mas elevada. Esta posicion permite sacar las visceras abdominales menores sin alterar a los demas organos.
o Cortar la piel a lo largo de la linea medio ventral, de la barbilla al ano. Retire la piel de ambos miembros del lado dorsal. Desarticule el miembro derecho en la articulacion femoral.
o En las vacas quite la glandula mamaria y ganglios linfaticos supramamarios
o El torax debe abrirse y explorarse antes de abrir el abdomen.
o Evite punzar el intestino. Extienda la incision anteriormente ventral al area lumbar a las costillas. Continue la incision posterior y ventralmente a la linea media y desde alli al cartilago xifoideo.
o Observe la cantidad y aspecto del fluido abdominal y toracico, el aspecto de los organos interiores y la presencia de materiales anormales (comida, parasitos, etc).
o Puede ser aconsejable tomar las muestras para cultivos en este momento ya que la manipulacion intensa puede producir contaminacion.
o Retire el ganglio derecho suprarrenal que es adyacente y posterior al higado y anterior al riñon.
o Retire el duodeno y observe la entrada del conducto biliar.
o Examine el pancreas que se encuentra posterodorsal a la misma area.
o Examine el colon en la entrada pelviana. Traccione su mesenterio.
o Retire toda la masa intestinal traccionando anteroventralmente
o Retire el riñon izquierdo, la glandula suprarrenal y la uretra adjunta.
o Retire el rumen y bazo como una sola masa.
o Traccione la union del reticulo-omasal, separando el omaso y abomaso del rumen y reticulum. Corte el rumen y reticulum en la linea medio-dorsal. Examine y quite su contenido.
o Lave el rumen con agua fria. Quite el omento del abomaso y corte el abomaso a lo largo de su curvatura menor. Extienda el corte a traves del surco del omaso.
o Quite el diafragma, el higado y la vena cava posterior juntos.
o Abra la pelvis, quite como una masa el recto y los genitales. Despues de separar el recto y el ano, abra todas las estructuras quitadas. En la hembra es importante abrir el tracto genital entero y examinar todos los componentes y el volumen de las diferentes cavidades (uterina, vaginal). En los machos quite la vaina, pene y los testiculos y examine
o Despues de retirar las uniones de la lengua a la mandibula retractar la lengua, desarticule el hioides. Entonces retire la lengua, la laringe, la traquea y el esofago en la entrada toracica. Mientras retira en el esofago y la traquea, corte el mediastinum dorsal a la aorta, la union esternal del pericardio. Ponga los pulmones en una mesa con la lengua hacia dorsal y examine.
o Examine las glandulas tiroides y paratiroides.
o Examine y corte todos los ganglios linfaticos.
o Abra la laringe y la traquea.
o Abra las venas y arterias pulmonares.
o Examine el corazon y aorta.
o Despues de ubicar la sinfisis mandibular, corte longitudinalmente la cabeza a lo largo de su linea media, quite el septum nasal. Examine los dientes.
o Quite la medula espinal.
o Examine musculos, huesos y articulaciones despues de levantar la piel.
o Despues de completar los necropsia todos los organos se ponen en el cadaver.
o Registre todos los resultados de necropsia por escrito

PROTOCOLO DE RECOLECCION DE MUESTRAS

El proposito:
Recolectar muestras (tejidos, sangre, fluidos) de los animales mutilados, elementos del ambiente (tierra, plantas y cualquier otra muestra que podria ayudar a la investigacion), para examenes de laboratorio mas extensos.
El equipo necesario:
Cuchillos afilados, tijeras, jeringas de plastico esteriles (5-10 ml) y agujas, envases de plastico de boca ancha, bolsas de nylon o de plastico con cerradura hermetica (de diferentes tamaños), envases con formol al 10%, conservantes de hielo, tubos esteriles y tubos tapa rosca para recoleccion de fluidos, cajas de telgopor para el envio de las muestras, etiquetas, lapiceras para identificar los rotulos.
Los examenes del laboratorio rutinarios:
La patologia macroscopica e histopatologia sirven para establecer las lesiones macroscopicas y microscopicas en los diferentes tejidos. La microscopia puede establecer la naturaleza del corte, diferenciando eventuales instrumentos afilados de lesiones rasgadas y mordeduras producidas por animales rapaces y carroñeros. Las lesiones en organos diferentes pueden ayudar a encontrar la causa real de la muerte.
La bacteriologia, apunta a establecer si los patogenos bacterianos estan involucrados en la muerte. Las bacterias capaces de causar septicemias, como el Bacilus anthracis, Pasteurella multocida, Clostridium chauvoei y septicum, Listeria monocytogenes, Leptospira sp., E.coli, son entre otros, los agentes patogenos mas significativos. Es necesario hacer bacteriologia aun cuando simplemente sea para descartar la posibilidad de que un agente bacteriano estuviera involucrado en la causa de muerte.
La toxicologia apunta a determinar si las sustancias toxicas estaban involucradas en la causa de la muerte. Entre estos puede mencionarse: los metales pesados (principalmente mercurio), arsenico, selenio, los pesticidas (Antu, Warfarina, Dicumarol, Warbex), herbicidas (2-4 D, Atrazine, Bladex,), insecticidas (hidrocarbonatos clorados, organofosforados, carbamatos), micotoxinas (aflatoxinas, alcaloides del cornezuelo del centeno, fumonisina, ochratoxina, etc), toxicos naturales (nitratos, nitritos, cianuro, etc).
Algunas veces, cuando los tejidos se obtienen poco despues de la muerte, otras pruebas podrian ser necesarias (enzimologia, hematologia, citologia, virologia, bioquimica, etc.).
A veces causas multiples pueden identificarse como responsables de la muerte. Por eso es necesario hacer examenes de laboratorio complejos.
La metodologia:
Para histopatologia: secciones de tejidos (piel, bordes de la lesion, bazo, corazon, pulmon, cerebro, higado, linfonodulos, glandulas endocrinas) de no mas de 1 cm de espesor, que comprometan tejidos lesionados y aparentemente sanos. Debe prestarse especial atencion a los tejidos del “sitio extraño” en partes del cuerpo como la piel, los musculos, etc., y a la presencia de hemorragias extendidas en el tejido conectivo hipodermico en el area dorsal, del cuello a la base de la cola. Las muestras deben ser recolectadas lo mas pronto posible, sabiendo que la descomposicion empieza inmediatamente despues de la muerte y, en materia de horas, sobre todo cuando la temperatura externa es alta, los tejidos pueden ser inadecuados para la interpretacion de lesiones. Las muestras se recolectaran en frascos de boca ancha, conteniendo formol al 10% en una relacion de diez veces el volumen de las muestras.
Para bacteriologia: sangre, organos internos (higado, bazo, riñon, linfonodulos, cerebro), musculos, recolectados asepticamente, fluidos (toracico, abdominal, cerebroespinal, orina), obtenidos con jeringas esteriles o en tubos tapa rosca, en cantidades de 5-10 ml. Deben recolectarse las muestras y etiquetarse individualmente manteniendolos refrigerados hasta su llegada al laboratorio.
Para toxicologia: porciones de aproximadamente 100 g. de organos internos (higado, riñon), recolectados en bolsas plasticas o en frascos, volumenes de contenido del estomago o rumen en jeringas o bolsas, ojo entero o fluidos oculares en jeringas esteriles (para nitratos/nitritos, magnesio, sodio), alimentos, plantas (para pesticidas, herbicidas), orina (para alcaloides, arsenico, etilenglicol), suero sanguineo (para etilenglicol, magnesio, pesticidas).
Para otros analisis especificos debe usarse una metodologia particular para cada muestra y ponerse en contacto con los laboratorios especializados para su procesamiento.

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